Preview

Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия биологических наук

Пашыраны пошук

Влияние пробиотиков на микробиом рубца лактирующих коров

https://doi.org/10.29235/1029-8940-2024-69-4-280-288

Анатацыя

Подобраны методы выделения метагеномной ДНК из рубцовой жидкости молочных коров, позволяющие получить препараты нуклеиновых кислот высокой чистоты без ингибиторов ПЦР. Определены доминирующие таксоны микробиома рубца молочных коров, подобраны праймеры и температурно-временные параметры для их выявления методом ПЦР. Показана целесообразность использования кормовых добавок «Споробакт-К» на основе бактерий рода Bacillus и «Румибакт» на основе пропионовокислых бактерий для контроля условно-патогенной микробиоты, улучшения рубцового пищеварения и снижения риска развития ацидоза у лактирующих коров.

Аб аўтарах

Н. Сверчкова
Государственное научно-производственное объединение «Химический синтез и биотехнологии»
Беларусь


И. Проскурнина
Государственное научно-производственное объединение «Химический синтез и биотехнологии»
Беларусь


В. Литвинова
Институт общей генетики имени Н.И. Вавилова РАН
Расія


Н. Рябая
Институт микробиологии НАН Беларуси
Беларусь


А. Саханчук
Научно-практический центр НАН Беларуси по животноводству
Беларусь


Э. Коломиец
Государственное научно-производственное объединение «Химический синтез и биотехнологии»
Беларусь


Спіс літаратуры

1. Лаптев, Г. Ю. Микробиом рубца жвачных: современные представления / Г. Ю. Лаптев, Л. А. Ильина, В. В. Солдатова // Животноводство России. – 2018. – № 10. – С. 38–42.

2. Пробиотики на основе бактерий рода Bacillus в птицеводстве / Н. В. Феоктистова [и др.] // Уч. записки Казан. ун-та. Сер. естеств. науки. – 2017. – № 1 (159). – С. 85–107.

3. Пробиотические препараты на основе микроорганизмов рода Bacillus / О. В. Федорова [и др.] // Вестн. технолог. ун-та. – 2016. – Т. 15, № 19. – С. 170–174.

4. Сверчкова, Н. В. Критерии отбора и характеристика штаммов спорообразующих бактерий рода Bacillus – основы пробиотических препаратов и кормовых добавок для животноводства / Н. В. Сверчкова, Э. И. Коломиец // Вес. Нац. акад. навук Беларусi. Сер. бiял. навук. – 2022. – Т. 67, № 1. – С. 105–113.

5. Оптимизация метода выделения метагеномной ДНК из рубцовой жидкости лактирующих коров / В. С. Летвинова [и др.] // Актуальные проблемы инфекционной патологии животных и пути их решения: материалы Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. Дню белорус. науки и 95-летию кафедры эпизоотологии и инфекционных болезней, Витебск, 15‒16 декабря 2022 г. / редкол.: Н. И. Гавриченко (гл. ред.) [и др.]. – Витебск, 2023. – С. 160–162.

6. New primers for the class Actinobacteria: application to marine and terrestrial environments / J. E. M. Stach [et al.] // Environ. Microbiol. – 2003. – Vol. 5, N 10. – P. 828–841. https://doi.org/10.1046/j.1462-2920.2003.00483.x

7. Improved group-specific PCR primers for denaturing gradient gel electrophoresis analysis of the genetic diversity of complex microbial communities / M. Mühling [et al.] // ISME J. – 2008. – Vol. 2, N 4. – P. 379–392. https://doi.org/10.1038/ismej.2007.97

8. The Gut microbiotassay: a high-throughput qPCR approach combinable with next generation sequencing to study gut microbial diversity / M. L. Hermann-Bank [et al.] // BMC Genomics. – 2013. – Vol. 14. – Art. 788. https://doi.org/10.1186/14712164-14-788

9. Improvement of phylumand class-specific primers for real-time PCR quantification of bacterial taxa / T. Bacchetti de Gregoris [et al.] // J. Microbiol. Methods. – 2011. – Vol. 86, N 3. – P. 351–356. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2011.06.010

10. Development of qPCR platform with probes for quantifying prevalent and biomedically relevant human gut microbial taxa / I. Kurina [et al.] // Mol. Cell. Probes. – 2020. – Vol. 52. – Art. 101570. https://doi.org/10.1016/j.mcp.2020.101570

11. Теппер, Е. З. Практикум по микробиологии: учеб. пособие / Е. З. Теппер, В. К. Шильникова, Г. И. Переверзева; под ред. В. К. Шильниковой. – 5-е изд., перераб. и доп. – М.: Дрофа, 2004. – 256 с.

12. Исследование микробиома рубца у овец с использованием молекулярно-генетических методов (обзор) / Е. М. Колоскова [и др.] // Проблемы биологии продуктивных животных. – 2020. – № 4. – С. 5–26.

13. Лаптев, Г. Ю. Микробиом рубца – основа здоровья коров / Г. Ю. Лаптев, Е. А. Йылдырым, Л. А. Ильина // Животноводство России. – 2020. – № 4. – С. 42–45.

14. Мирошникова, М. С. Основные представители микробиома рубца / М. С. Мирошникова // Животноводство и кормопроизводство. – 2020. – Т. 103, № 4. – С. 174–185.

15. Pediococcus acidilactici isolated from the rumen of lambs with rumen acidosis, 16S rRNA identification and sensibility to monensin and lasalocid / M. A. Cobos [et al.] // Res. Vet. Sci. – 2011. – Vol. 90, N 1. – P. 26–30. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2010.05.006


##reviewer.review.form##

Праглядаў: 141


Creative Commons License
Кантэнт даступны пад ліцэнзіяй Creative Commons Attribution 3.0 License.


ISSN 1029-8940 (Print)
ISSN 2524-230X (Online)