Эффективность мультиплексной RT-PCR для дифференциальной диагностики вирусов голубики высокорослой (Vaccinium corymbosum L.)

Полный текст:


Аннотация

Разработка мультиплексной RT-PCR (mRT-PCR) для одновременного выявления нескольких вирусов голубики является актуальной задачей, направленной на своевременную дифференциальную диагностику вирусов с целью оптимизации и удешевления мероприятий по контролю над распространением данных патогенов. В результате проведенных исследований установлено, что метод mRT-PCR с использованием двух комбинаций праймеров (ШШ, MF05-22-F/MF05-21-R, AtropaNad2.1a/2.2b и RDP-1/RDP-2, MF05-22-F/MF05-21-R, AtropaNad2.1a/2.2b) может быть применен для одновременной и дифференциальной диагностики таких патогенов голубики, как вирус ожога голубики (В^еУ) и вирус кольцевой пятнистости табака (TRSV). Использование mRT-PCR для выявления вирусных патогенов голубики позволяет, в сравнении с RT-PCR, снизить затраты на проведение тестирования на 49,5 %.

Об авторах

Т. Н. Божидай
Институт плодоводства
Беларусь


Н. Н. Волосевич
Институт плодоводства
Беларусь


Н. В. Кухарчик
Институт плодоводства
Беларусь


Список литературы

1. Certification schemes. Pathogen-tested material of Vaccinium spp. EPPO Standards PM 4/18 (1) // Bull. OEPP/EPPO. 1997. Vol. 27. P. 195-204.

2. Menzel W., Zahn V., Maiss E. // J. of Virol. Meth. 2003. Vol. 110. P. 153-157.

3. Hassan M., Myrta A., Polak J. // J. of Virol. Meth. 2006. Vol. 133. P. 124-129.

4. Yu Y., Zhao Z., Jiang D. et al. // Lett. in Appl. Microbiol. 2013. Vol. 57. P. 350-355.

5. Menzel W., Jelkmann W., Maiss E. // J. of Virol. Meth. 2002. Vol. 99. P. 81-92.

6. Thompson J. R, Wetzel S, Klerks M. M. et al. // J. of Virol. Meth. 2003. Vol. 111. P. 85-93.

7. Ji Z., Zhao X., Duan H. et al. // Acta Virol. 2013. Vol. 57. P. 435-441.

8. Yao B., Wang G., Ma X. et al. // J. of Virol. Meth. 2014. Vol. 196. P. 113-119.

9. Noorani M. S., Awasthi P., Sharma M. P. et al. // J. of Virol. Meth. 2013. Vol. 193. P. 103-107.

10. Jarosova J., Kundu J. K. // Scientia Horticulturae. 2010. Vol. 125. P. 68-72.

11. Liu F., Feng L., Chen X. et al. // J. of Phytopathol. 2012. Vol. 160. P. 622-627.

12. Bertolini E., Olmos A., Martinez M. C. et al. // J. of Virol. Meth. 2001. Vol. 96. P. 33-41.

13. Ali R. N., Dann A. L., Cross P. A., Wilson C. R. // Arch. of Virol. 2014. Vol. 159. P. 3095-3099.

14. Tuo D., Shen W., Yang Y. et al. // Viruses. 2014. Vol. 6. P. 3893-3906.

15. Wegener L. A. // Epidemiology and strain identification of blueberry scorch virus on highbush blueberry in British Columbia: thesis.. master of science in plant virology. Burnaby, 2006.

16. Paduch-Cichal E., Chodorska M., Kalinowska E., Komorowska B. // Acta Sci. Pol., Hortorum Cultus. 2014. Vol. 13, N 3. P. 3-11.

17. Fuchs M., Abawi G. S., Marsella-Herrick P. et al. // J. of Plant Pathol. 2010. Vol. 92, N 2. P. 451-459.


Дополнительные файлы

Просмотров: 224

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1029-8940 (Print)
ISSN 2524-230X (Online)