Физиолого-биохимические особенности роста проростков сахарной свеклы при предпосевной обработке семян брассиностероидами
https://doi.org/10.29235/1029-8940-2026-71-4-292-299
Аннотация
В статье приведены результаты анализа проростков сахарной свеклы, семена которых перед посевом были инкрустированы защитно-стимулирующими составами (ЗСС) на основе поливинилацетатной дисперсии (ПВА), содержащими брассинолид (БЛ, ЗСС-БЛ) или эпибрассинолид (ЭБЛ, ЗСС-ЭБЛ) в концентрации 10–8 М. Изучены ростовые параметры, содержание фотосинтетических пигментов и фотосинтетическая активность растений. Установлено, что обработка семян ЗСС-ЭБЛ обеспечила увеличение массы корня проростков на 56 % относительно контроля. Методом PAM-флуориметрии выявлено, что ЗСС-БЛ снижает нерегулируемые потери энергии фотосистемы (ФС) II (Y(NO)) на 24 % и повышает эффективность работы ФС II (Y(II)) на 62 %.
Об авторах
А. А. БоровикБеларусь
Боровик Анастасия Александровна – мл. науч. сотрудник
ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск
П. А. Небышинец
Беларусь
Небышинец Полина Алексеевна – науч. сотрудник
ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск
Т. В. Самович
Беларусь
Самович Татьяна Викторовна – канд. биол. наук, вед. науч. сотрудник
ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск
Н. А. Ламан
Беларусь
Ламан Николай Афанасьевич – академик, д-р биол. наук, заведующий лабораторией
ул. Академическая, 27, 220072, г. Минск
Список литературы
1. FAOSTAT. Crops and livestock products // Food and Agriculture Organization of the United Nations. – 2022. – URL: https://www.fao.org/faostat/en/#data/QCL (date of access: 24.03.2026).
2. Zhang, Y. OMICS Technologies and Applications in Sugar Beet / Y. Zhang, J. Nan, B. Yu // Frontiers in Plant Science. – 2016. – Vol. 7. – Art. 900. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00900
3. Lange, W. Taxonomy and cultonomy of beet (Beta vulgaris L.) / W. Lange, W. A. Brandenburg, T. S. M. De Block // Botanical Journal of the Linnean Society. – 1999. – Vol. 130, N 1. – P. 81–96. https://doi.org/10.1111/j.1095-8339.1999.tb00785.x
4. Ober, E. S. Abiotic Stress in Sugar Beet / E. S. Ober, A. Rajabi // Sugar Tech. – 2010. – Vol. 12, N 3–4. – P. 294–298. https://doi.org/10.1007/s12355-010-0035-3
5. Jaggard, K. W. The relative effects of drought stress and virus yellows on the yield of sugarbeet in the UK, 1980–95 / K. W. Jaggard, A. M. Dewar, J. D. Pidgeon // The Journal of Agricultural Science. – 1998. – Vol. 130, N 3. – P. 337–343. https://doi.org/10.1017/s0021859698005371
6. Hoffmann, C. M. Sucrose Accumulation in Sugar Beet Under Drought Stress / C. M. Hoffmann // Journal of Agronomy and Crop Science. – 2010. – Vol. 196, N 4. – P. 243–252. https://doi.org/10.1111/j.1439-037x.2009.00415.x
7. Finch-Savage, W. E. Seed vigour and crop establishment: extending performance beyond adaptation / W. E. FinchSavage, G. W. Bassel // Journal of Experimental Botany. – 2016. – Vol. 67, N 3. – P. 567–591. https://doi.org/10.1093/jxb/erv490
8. Chaves, M. M. Photosynthesis under drought and salt stress: regulation mechanisms from whole plant to cell / M. M. Chaves, J. Flexas, C. Pinheiro // Annals of Botany. – 2009. – Vol. 103, N 4. – P. 551–560. https://doi.org/10.1093/aob/mcn125
9. Lawlor, D. W. Photosynthetic carbon assimilation and associated metabolism in relation to water deficits in higher plants / D. W. Lawlor, G. Cornic // Plant, Cell and Environment. – 2002. – Vol. 25, N 2. – P. 275–294. https://doi.org/10.1046/j.0016-8025.2001.00814.x
10. Murchie, E. H. Chlorophyll fluorescence analysis: a guide to good practice and understanding some new applications / E. H. Murchie, T. Lawson // Journal of Experimental Botany. – 2013. – Vol. 64, N 13. – P. 3983–3998. https://doi.org/10.1093/jxb/ert208
11. Emerging roles of plant growth regulators for plants adaptation to abiotic stress–induced oxidative stress / A. Hossain, B. Pamanick, V. K. Venugopalan [et al.] // Emerging Plant Growth Regulators in Agriculture. Roles in Stress Tolerance / eds.: T. Aftab, M. Naeem. – London; San Diego, 2022. – P. 1–72. https://doi.org/10.1016/b978-0-323-91005-7.00010-2
12. Bajguz, A. Brassinosteroids – occurrence and chemical structures in plants / A. Bajguz // Brassinosteroids: A Class of Plant Hormone / eds. S. Hayat, A. Ahmad. – Dordrecht, 2011. – P. 1–27. https://doi.org/10.1007/978-94-007-0189-2_1
13. Divi, U. K. Brassinosteroid: a biotechnological target for enhancing crop yield and stress tolerance / U. K. Divi, P. Krishna // New Biotechnology. – 2009. – Vol. 26, N 3–4. – P. 131–136. https://doi.org/10.1016/j.nbt.2009.07.006
14. Rodriguez-Amaya, D. B. HarvestPlus handbook for carotenoid analysis / D. B. Rodriguez-Amaya, M. Kimura. – Washington: HarvestPlus, 2004. – 63 p.
15. The Identification of Chlorophyll and Its Derivatives in The Pigment Mixtures: HPLC-Chromatography, Visible and Mass Spectroscopy Studies / S. M. Milenković, J. B. Zvezdanović, T. D. Anđelković, D. Z. Marković // Advanced Technologies. – 2012. – Vol. 1, N 1. – P. 16–24.
16. Forni, E. HPLC separation and fluorimetric estimation of chlorophylls and pheophytins in fresh and frozen peas / E. Forni, M. Ghezzi, A. Polesello // Chromatography. – 1988. – Vol. 26, N 1. – P. 120–124. https://doi.org/10.1007/BF02268135
17. Dual-PAM-100 Measuring system for simultaneous assessment of p700 and chlorophyll fluorescence // Walz. – URL: https://www.walz.com/downloads/?filter=dual-pam-100 (date of access: 10.08.2026).
18. Singleton, V. L. Colorimetry of Total Phenolics with Phosphomolybdic-Phosphotungstic Acid Reagents / V. L. Singleton, J. A. Rossi // American Journal of Enology and Viticulture. – 1965. – Vol. 16. – P. 144–158. https://doi.org/10.5344/ajev.1965.16.3.144
19. Holá, D. Brassinosteroids and primary photosynthetic processes / D. Holá // Brassinosteroids in Plant Developmental Biology and Stress Tolerance / eds.: G. J. Ahammed, A. Sharma, J. Yu. – London, 2022. – Ch. 4. – P. 59–104. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-813227-2.00015-1
Рецензия
JATS XML


























