ВЛИЯНИЕ САЛИЦИЛОВОЙ КИСЛОТЫ НА СТРУКТУРНО-ФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ ФОТОСИНТЕТИЧЕСКОГО АППАРАТА И ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТАТУС РАСТЕНИЙ ЯЧМЕНЯ ПРИ ИНФИЦИРОВАНИИ ПАТОГЕНОМ BIPOLARIS SOROKINIANA (SACC.) SHOEM И ПОВЫШЕННОЙ ТЕМПЕРАТУРЕ

Полный текст:


Аннотация

Установлено, что салициловая кислота положительно влияет на устойчивость зеленых проростков ячменя (Hordeum vulgare L.) при совместном воздействии на них патогенной инфекции Вipolaris sorokiniana и гипертермии. Это выражается в нормализации функционирования фотосинтетического аппарата, снижении процессов пероксидного окисления липидов клеточных мембран, повышении пула Н2О2, участвующей в запуске защитных систем клетки, повышении активности НАДФН-оксидазы, осуществляющей генерацию активных форм кислорода при инфицировании растений патогенами и активации пероксидаз.

Об авторах

Л. М. Абрамчик
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь


Е. В. Сердюченко
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь


Л. В. Пашкевич
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь


В. Н. Макаров
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь


Л. А. Зеневич
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь


Л. Ф. Кабашникова
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь


Список литературы

1. Bipolaris sorokiniana, a cereal pathogen of global concern: cytological and molecular approaches towards better control / J. Kumar [et al.] // Mol. Plant Pathol. – 2002. – Vol. 3, iss. 4. – P. 185–195.

2. Duveiller, E. Pathogenicity of Bipolaris sorokiniana isolates from wheat roots, leaves and grains in Mexico / E. Duveiller, G. Altamirano // Plant Pathol. – 2000. – Vol. 49, iss. 2. – P. 235–242.

3. Яруллина, Л. Г. Клеточные механизмы формирования устойчивости растений к грибным патогенам / Л. Г. Ярул¬лина, Р. И. Ибрагимов. – Уфа: Гилем, 2006. – 228 с.

4. Горовой, Л. Ф. Системная индуцированная устойчивость растений и препарат нового поколения биофунгицид «Микосан» / Л. Ф. Горовой // Посібник укр. хлібороба. – 2012. – № 1. – С. 178–186.

5. Содержание салициловой кислоты в листьях проростков озимой пшеницы различной устойчивости к фитопатогенам / Л. А. Крючкова [и др.] // Физиол. и биохим. культур. раст. – 2006. – Т. 38, № 1. – С. 45–52.

6. Alvarez, M. A. Salicylic acid in machinery of hypersensitive cell death and disease resistance / М. А. Alvarez // Plant Mol. Biol. – 2000. – Vol. 44, iss. 3. – P. 429–442.

7. Salicylic acid mediated by the оxidative burst is a key molecule in local and systemic responses of cotton challenged by an avirulent race of Xanthomonas campestris pv malvacearum / C. Martinez [et al.] // Plant Physiol. – 2000. – Vol. 122, N 3. – P. 757–766.

8. Шлык, А. А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев. / А. А. Шлык // Биохимические методы в физиологии растений. – М.: Наука, 1971. – С. 154–170.

9. A highly sensitive fluorescent micro-assay of H2O2 release from activated human leukocytes using a dehydroxyphenoxazine derivative / J. G. Mohanty [et al.] // J. Immunol. Meth. – 1997. – Vol. 202, N 2. – P. 133–141.

10. Гавриленко, В. Ф. Большой практикум по физиологии растений / В. Ф. Гавриленко, М. Е. Ладыгина, Л. М. Хандобина. – М.: Высш. школа, 1975. – 392 с.

11. Продукты перекисного окисления липидов как возможные посредники между воздействием повышенной температуры и развитием стресс-реакции у растений / Л. Н. Курганова [и др.] // Физиол. раст. – 1999. – Т. 46, № 2. – С. 218–222.

12. Pinton, R. Zinc deficiency enhanced NAD(P)H-dependent superoxide radical production in plasma membrane vesicles isolated from roots of bean plants / R. Pinton, I. Cakmak, H. Marschner // J. Exp. Bot. – 1994. – Vol. 45, N 1. – P. 45–50.

13. Protein measurement with the Folin phenol reagent / O. H. Lowry [et al.] // J. Biol. Chem. – 1951. – Vol. 193, N 2. – P. 265–275.

14. Первичный и вторичный метаболизм озимой пшеницы при холодовом закаливании и действии антиоксидантов / Н. А. Олениченко [и др.] // Прикл. биохим. и микробиол. – 2008. – Т. 44, № 5. – С. 523–529.

15. Корнеев, Д. Ю. Информационные возможности метода индукции флуоресценции хлорофилла / Д. Ю. Корнеев. – Киев: Альтерпресс, 2002. – 188 с.

16. Рокицкий, П. Ф. Биологическая статистика / П. Ф. Рокицкий. – Минск: Высш. школа, 1973. – 2-е. изд. – 328 с.

17. Тарчевский, И. А. Сигнальные системы клеток растений / И. А. Тарчевский. – М.: Наука, 2002. – 294 с.

18. Chen, Z. Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid / Z. Chen, H. Silva, D. F. Klessing // Science. – 1993. – Vol. 262, N 12. – P. 1883–1886.

19. Колупаев, Ю. Е. Активные формы кислорода как посредники в индуцировании теплоустойчивости проростков пшеницы салициловой кислотой / Ю. Е. Колупаев, Ю. В. Карпец // Физиол. и биохим. культур. раст. – 2007. – Т. 39, № 3. – С. 242–248.

20. Барабой, В. А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов / В. А. Барабой // Успехи совр. биол. – 1991. – Т. 111, вып. 6. – С. 923–932.

21. Sagi, M. Production of reactive oxygen species by plant NADPH oxidases / М. Sagi, R. Fluhr // Plant Physiol. – 2006. – Vol. 141, N 2. – P. 336–340.

22. Wang, L. Salicyli c acid-induced heat or cold tolerance in relation to Ca2+ homeostasis and antioxidant systems in young grape plants / L.-J. Wang, S.-L. Li // Plant Sci. – 2006. – Vol. 170, iss. 4. – P. 685–694.

23. Salicylic acid mediated by the оxidative burst is a key molecule in local and systemic responses of cotton challenged by an avirulent race of Xanthomonas campestris pv malvacearum / С. Martinez [et al.] // Plant Physiol. – 2000. – Vol. 122, N 3. – P. 757–766.


Дополнительные файлы

Просмотров: 270

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1029-8940 (Print)
ISSN 2524-230X (Online)