Активность аскорбат-глутатионового цикла в растениях огурца (Cucumis sativus) в условиях светодиодного освещения
Аннотация
Использование светодиодного освещения с узкой красной или синей полосой спектра излучения приводит к развитию в листьях огурца окислительного стресса, сопровождающегося изменением активности важной защитной системы растительной клетки - аскорбат-глутатионового цикла. Комбинированное использование красных и синих светодиодов недостаточно для создания полноценного освещения при выращивании растений огурца. Предполагается, что расширение полос испускания светодиодного осветителя за счет использования светодиодов с максимумами излучения в желто-оранжевой и голубой области спектра позволит сконструировать более эффективные источники фотосинтетически активного света. При проектировании таких источников освещения определение активности аскорбат-глутатионового цикла может дать ценную информацию, а именно: нормализация функционирования активности аскорбат-глутатионового цикла будет свидетельствовать об эффективности создаваемых светильников.
Об авторах
Е. В. Вязов
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь
Беларусь
Н. В. Козел
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь
Беларусь
Н. В. Шалыго
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь
Беларусь
В. П. Доманский
Институт биофизики и клеточной инженерии НАН Беларуси
Беларусь
Беларусь
Список литературы
1. Аверчева О. В., Бассарская Е. М., Жигалова Т. В. и др. // Физиол. растен. 2010. Т. 57. С. 404-414.
2. Мартиросян Ю. Ц., Кособрюхов А. А., Креславский В. Д. и др. // С.-х. биология. 2008. № 3. С. 102-105.
3. Бахарев И., Прокофьев А., Туркин А. и др. // Современные технологии автоматизации. 2010. № 2. С. 76-82.
4. Вязов Е. В., Шалыго Н. В. // Весці НАН Беларуси. Сер. бiял. навук. 2013. № 2. С. 71-74.
5. Arora A, Sairam R. K., Srivastava G. C. // Current Science. 2002. Vol. 82, N 10. P. 1227-1238.
6. Apel K., Hirt H. // Annu. Rev. Plant Biol. 2004. Vol. 55, N 1. P. 373-399.
7. Asada K. // Plant Physiol. 2006. Vol. 141. P. 391-396.
8. Asada K. // Phil. Trans. R. Soc. Lond B Biol Sci. 2000. Vol. 355, N 1402. P. 1419-1431.
9. Law M. Y, Charles SA., Halliwell B. // Biochem. J. 1983. Vol. 210. P. 899-903.
10. Nakano Y, Asada K. // Plant Cell Physiol. 1981. Vol. 22, N 5. P. 867-880.
11. Hissin P. J, Hilf R. // Anal. Biochem. 1976. Vol. 74, N 1. P. 214-226.
12. Шалыго Н. В., Щербаков Р. А., Доманская И. Н. и др. // Физиол. и биохим. культ. растен. 2007. Т. 39, № 3. С. 264-270.
13. Gechev T., Gadjiev I., Breusagemet E. V. et al. // Cell. Mol. Life Sci. 2002. Vol. 59, N 4. P. 708-714.
14. Bradford M. // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248-254.
15. Козел Н. В., Доманский В. П. // Вестн. фонда фунд. иссл. 2012. № 1. С. 89-100.
16. Briggs W., John C. // Trends in Plant Science. 2002. Vol. 7 N 5. P. 204-210.
17. Вязов Е. В., Шалыго Н. В. // Материалы Междунар. науч. конф. «Молекулярные, мембранные и клеточные основы функционирования биосистем». Минск, 19-21 июня 2012 г. Мн., 2012. С. 98-101.
18. Козел H. В., Шалыго Н. В. // Физиол. растен. 2009. Т. 56, № 3. С. 351.
19. Доманский В. П., Козел Н. В. // Весці НАН Беларуси. Сер. бiял. навук. 2013. № 3. С. 56-59.
Рецензия
Просмотров: 710
Послать статью по эл. почте 
