Preview

Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия биологических наук

Пашыраны пошук

Ультраструктурная арганізацыя хваставога плаўніка блакітнага гурамі (Trichogaster trichopterus Pallas)

https://doi.org/10.29235/1029-8940-2026-71-3-250-264

Анатацыя

Было проведено гистологическое и электронно-микроскопическое исследование структуры хвостовых плавников половозрелых особей голубых гурами (Trichogaster trichopterus Pallas). Установлено, что на фронтальных срезах органа внешний вид как лепидотрихий, так и других структур значительно различается в его проксимальной, центральной и дистальной частях. Проксимальная часть плавника содержит чешую и межлучевые мышцы, центральная часть – только чешую, а дистальней отмеченные структуры отсутствуют. Подтверждено, что механической опорой хвостового плавника гурами является не только совокупность лепидотрихий, но и связанная с ними система прослоек коллагеновых волокон, которые расположены в рыхлой соединительной ткани, вплетаясь в дерму и гемитрихии. В межгемитрихиальном пространстве центральных и дистальных отделов плавника обнаруживаются плотные скопления специфических фибробластов, большинство из которых крупные, многоугольной формы, с большими ядрами и светлой цитоплазмой. В хвостовых плавниках гурами идентифицированы следующие клетки с центриолями: эпидермоциты базального и супрабазального слоев эпидермиса, фибробласты соединительной ткани, клетки Шванна, эндотелиальные клетки, миосателлитные клетки и крупные фибробласты межгемитрихиального пространства.

Аб аўтарах

А. Астроўскі
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі
Беларусь


Т. Барадзіна
Інстытут біяхіміі біялагічна актыўных злучэнняў Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі
Беларусь


А. Астроўская
Гродзенскі дзяржаўны медыцынскі ўніверсітэт
Беларусь


Спіс літаратуры

1. Vitellogenin receptor mediates heat adaptability of oocyte development in mud crabs and zebrafish / L. Zhang, K. Wu, H. Li [et al.] // Nature Communications. – 2025. – Vol. 16, N 1. – Art. 3722. https://doi.org/10.1038/s41467-025-59035-3

2. Cellular transitions during cranial suture establishment in zebrafish / D. T. Farmer, J. E. Dukov, H.-J. Chen [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 6948. https://doi.org/10.1038/s41467-024-50780-5

3. ABE-ultramax for high-efficiency biallelic adenine base editing in zebrafish / W. Qin, F. Liang, Sh.-J. Lin [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 5613. https://doi.org/10.1038/s41467-024-49943-1

4. The miR-144/Hmgn2 regulatory axis orchestrates chromatin organization during erythropoiesis / D. A. Kretov, L. Fol kes, A. Mora-Martin [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 3821. https://doi.org/10.1038/s41467-024-47982-2

5. Antigen presentation plays positive roles in the regenerative response to cardiac injury in zebrafish / J. Cardeira-da-Silva, Q. Wang, P. Sagvekar [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 3637. https://doi.org/10.1038/s41467024-47430-1

6. Comparative transcriptomics coupled to developmental grading via transgenic zebrafish reporter strains identifies conserved features in neutrophil maturation / S. Kirchberger, M. R. Shoeb, D. Lazic [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 1792. https://doi.org/10.1038/s41467-024-45802-1

7. Kanungo, J. Special Issue “Zebrafish: A Model Organism for Human Health and Disease” // International Journal of Molecular Sciences. – 2025. – Vol. 26, N 10. – Art. 4624. https://doi.org/10.3390/ijms26104624

8. Marques, I. J. Model systems for regeneration: zebrafish / I. J. Marques, E. Lupi, N. Mercader // Development. – 2019. – Vol. 146, N 18. – Art. dev167692. https://doi.org/10.1242/dev.167692

9. Gene profile of zebrafish fin regeneration offers clues to kinetics, organization and biomechanics of basement membrane / P. Nauroy, A. Guiraud, J. Chlasta [et al.] // Matrix Biology. – 2019. – Vol. 75–76. – P. 82–101. https://doi.org/10.1016/j.matbio.2018.07.005

10. Барулин, Н. В. Использование данио рерио (zebrafish) для оценки нейротоксичности веществ / Н. В. Барулин, А. О. Жарикова // Актуальные проблемы экологии: сб. науч. ст., посвящ. 60-летию фак. биологии и экологии: по итогам XIX Междунар. науч.-практ. конф. (Гродно, 1–4 окт. 2024 г.) / Гродн. гос. ун-т им. Я. Купалы; редкол.: О. В. Янчуревич (гл. ред.) [и др.]. – Гродно, 2024. – С. 152–154.

11. Developmental constraints on fin diversity / A. Enny, K. Flaherty, Sh. Mori [et al.] // Development, Growth and Differentiation. – 2020. – Vol. 62, N 5. – P. 311–325. https://doi.org/10.1111/dgd.12670

12. Hardy, A. R. Sensing the structural characteristics of surfaces: texture encoding by a bottom-dwelling fish / A. R. Hardy, M. E. Hale // Journal of Experimental Biology. – 2020. – Vol. 223, N 21. – Art. jeb227280. https://doi.org/10.1242/jeb.227280

13. Old questions, new tools, and some answers to the mystery of fin regeneration / М.-А. Akimenko, M. Marí‐Beffa, J. Becerra, J. Géraudie // Developmental Dynamics. – 2003. – Vol. 226, N 2. – P. 190–201. https://doi.org/10.1002/dvdy.10248

14. Fine structure and histochemistry of the tail fin ray in teleosts / G. S. Montes, J. Becerra, O. M. S. Toledo [et al.] // Histochemistry. – 1982. – Vol. 75. – P. 363–376. https://doi.org/10.1007/BF00496739

15. Structure of the tail fin in teleosts / J. Becerra, G. S. Montes, S. R. R. Bexiga, L. C. U. Junqueira // Cell and Tissue Research. – 1983. – Vol. 230. – P. 127–137. https://doi.org/10.1007/BF00216033

16. Molecular and Cellular Basis of Regeneration and Tissue Repair / D. Pajalunga, A. Mazzola, A. Franchitto [et al.] // Cellular and Molecular Life Sciences. – 2007. – Vol. 65, N 1. – P. 8–15. https://doi.org/10.1007/s00018-007-7425-z

17. Loncarek, J. Building the right centriole for each cell type / J. Loncarek, M. Bettencourt-Dias // Journal of Cell Biology. – 2018. – Vol. 217, N 3. – P. 823–835. https://doi.org/10.1083/jcb.201704093

18. Kalbfuss, N. Towards understanding centriole elimination / N. Kalbfuss, P. Gönczy // Open Biology. – 2023. – Vol. 13, N 11. – Art. 230222. https://doi.org/10.1098/rsob.230222

19. Document 32010L0063. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes Text with EEA relevance // EUR-Lex / European Union. – URL: https://eur-lex.europa.eu/eli/dir/2010/63/oj/eng (date of access: 16.02.2026).

20. Reynolds, E. S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy / E. S. Reynolds // The Journal of Cell Biology. – 1963. – Vol. 17, N 1. – P. 208–212. https://doi.org/10.1083/jcb.17.1.208

21. Flammang, B. E. The fish tail as a derivation from axial musculoskeletal anatomy: an integrative analysis of functional morphology / B. E. Flammang // Zoology. – 2014. – Vol. 117, N 1. – P. 86–92. https://doi.org/10.1016/j.zool.2013.10.001

22. Composition of Peripheral Blood Leukocytes of Pink Salmon Oncorhynchus gorbuscha and Chum Salmon O. keta (Salmonidae) during the Marine Life Period / I. I. Gordeev, L. V. Balabanova, T. A. Suvorova, D. V. Mikryakov // Journal of Ichthyology. – 2022. – Vol. 62, N 2. – P. 322–326. https://doi.org/10.1134/s0032945222020060

23. Hematological methods in fish – Not only for beginners / M. Witeska, E. Kondera, K. Ługowska, B. Bojarski // Aquaculture. – 2022. – Vol. 547. – Art. 737498. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.737498

24. Soft Texture of Atlantic Salmon Fillets Is Associated with Glycogen Accumulation / J. S. Torgersen, E. O. Koppang, L. H. Stien [et al.] // PLoS One. – 2014. – Vol. 9, N 1. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085551

25. Analysis of Titin in Red and White Muscles: Crucial Role on Muscle Contractions Using a Fish Model / M.-P. Wu, N.-Ch. Chang, Ch.-L. Chung [et al.] // BioMed Research International. – 2018. – Vol. 2018, N 1. – Art. 5816875. https://doi.org/10.1155/2018/5816875

26. Dietary carbohydrates influence muscle texture of olive flounder Paralichthys olivaceus through impacting mitochondria function and metabolism of glycogen and protein / J. Liu, K. Deng, M. Pan [et al.] // Scientific Reports. – 2020. – Vol. 10, N 1. – Art. 21811. https://doi.org/10.1038/s41598-020-76255-3

27. Powell, R. L. Cultivation and differentiation of satellite cells from skeletal muscle of the rainbow trout Salmo gairdneri / R. L. Powell, M. V. Dodson, J. G. Cloud // Journal of Experimental Zoology. – 1989. – Vol. 250, N 3. – P. 333–338. https://doi.org/10.1002/jez.1402500314

28. Satellite-like cells contribute to pax7-dependent skeletal muscle repair in adult zebrafish / M. A. Berberoglu, T. L. Gallagher, Z. T. Morrow [et al.] // Developmental Biology. – 2017. – Vol. 424, N 2. – P. 162–180. https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2017.03.004


##reviewer.review.form##

Праглядаў: 8

JATS XML


Creative Commons License
Кантэнт даступны пад ліцэнзіяй Creative Commons Attribution 3.0 License.


ISSN 1029-8940 (Print)
ISSN 2524-230X (Online)