Ультраструктурная арганізацыя хваставога плаўніка блакітнага гурамі (Trichogaster trichopterus Pallas)
https://doi.org/10.29235/1029-8940-2026-71-3-250-264
Аннотация
Было проведено гистологическое и электронно-микроскопическое исследование структуры хвостовых плавников половозрелых особей голубых гурами (Trichogaster trichopterus Pallas). Установлено, что на фронтальных срезах органа внешний вид как лепидотрихий, так и других структур значительно различается в его проксимальной, центральной и дистальной частях. Проксимальная часть плавника содержит чешую и межлучевые мышцы, центральная часть – только чешую, а дистальней отмеченные структуры отсутствуют. Подтверждено, что механической опорой хвостового плавника гурами является не только совокупность лепидотрихий, но и связанная с ними система прослоек коллагеновых волокон, которые расположены в рыхлой соединительной ткани, вплетаясь в дерму и гемитрихии. В межгемитрихиальном пространстве центральных и дистальных отделов плавника обнаруживаются плотные скопления специфических фибробластов, большинство из которых крупные, многоугольной формы, с большими ядрами и светлой цитоплазмой. В хвостовых плавниках гурами идентифицированы следующие клетки с центриолями: эпидермоциты базального и супрабазального слоев эпидермиса, фибробласты соединительной ткани, клетки Шванна, эндотелиальные клетки, миосателлитные клетки и крупные фибробласты межгемитрихиального пространства.
Об авторах
А. А. АстроўскіБеларусь
Островский Александр Александрович – д-р мед. наук, профессор, вед. науч. сотрудник
пл. Антония Тызенгауза, 7, 230023, г. Гродно
Т. А. Барадзіна
Беларусь
Бородина Татьяна Александровна – науч. сотрудник
пл. Антония Тызенгауза, 7, 230023, г. Гродно
А. Б. Астроўская
Беларусь
Островская Оксана Борисовна – канд. мед. наук, доцент, ст. науч. сотрудник
ул. Горького, 80, 230009, г. Гродно
Список литературы
1. Vitellogenin receptor mediates heat adaptability of oocyte development in mud crabs and zebrafish / L. Zhang, K. Wu, H. Li [et al.] // Nature Communications. – 2025. – Vol. 16, N 1. – Art. 3722. https://doi.org/10.1038/s41467-025-59035-3
2. Cellular transitions during cranial suture establishment in zebrafish / D. T. Farmer, J. E. Dukov, H.-J. Chen [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 6948. https://doi.org/10.1038/s41467-024-50780-5
3. ABE-ultramax for high-efficiency biallelic adenine base editing in zebrafish / W. Qin, F. Liang, Sh.-J. Lin [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 5613. https://doi.org/10.1038/s41467-024-49943-1
4. The miR-144/Hmgn2 regulatory axis orchestrates chromatin organization during erythropoiesis / D. A. Kretov, L. Fol kes, A. Mora-Martin [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 3821. https://doi.org/10.1038/s41467-024-47982-2
5. Antigen presentation plays positive roles in the regenerative response to cardiac injury in zebrafish / J. Cardeira-da-Silva, Q. Wang, P. Sagvekar [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 3637. https://doi.org/10.1038/s41467024-47430-1
6. Comparative transcriptomics coupled to developmental grading via transgenic zebrafish reporter strains identifies conserved features in neutrophil maturation / S. Kirchberger, M. R. Shoeb, D. Lazic [et al.] // Nature Communications. – 2024. – Vol. 15, N 1. – Art. 1792. https://doi.org/10.1038/s41467-024-45802-1
7. Kanungo, J. Special Issue “Zebrafish: A Model Organism for Human Health and Disease” // International Journal of Molecular Sciences. – 2025. – Vol. 26, N 10. – Art. 4624. https://doi.org/10.3390/ijms26104624
8. Marques, I. J. Model systems for regeneration: zebrafish / I. J. Marques, E. Lupi, N. Mercader // Development. – 2019. – Vol. 146, N 18. – Art. dev167692. https://doi.org/10.1242/dev.167692
9. Gene profile of zebrafish fin regeneration offers clues to kinetics, organization and biomechanics of basement membrane / P. Nauroy, A. Guiraud, J. Chlasta [et al.] // Matrix Biology. – 2019. – Vol. 75–76. – P. 82–101. https://doi.org/10.1016/j.matbio.2018.07.005
10. Барулин, Н. В. Использование данио рерио (zebrafish) для оценки нейротоксичности веществ / Н. В. Барулин, А. О. Жарикова // Актуальные проблемы экологии: сб. науч. ст., посвящ. 60-летию фак. биологии и экологии: по итогам XIX Междунар. науч.-практ. конф. (Гродно, 1–4 окт. 2024 г.) / Гродн. гос. ун-т им. Я. Купалы; редкол.: О. В. Янчуревич (гл. ред.) [и др.]. – Гродно, 2024. – С. 152–154.
11. Developmental constraints on fin diversity / A. Enny, K. Flaherty, Sh. Mori [et al.] // Development, Growth and Differentiation. – 2020. – Vol. 62, N 5. – P. 311–325. https://doi.org/10.1111/dgd.12670
12. Hardy, A. R. Sensing the structural characteristics of surfaces: texture encoding by a bottom-dwelling fish / A. R. Hardy, M. E. Hale // Journal of Experimental Biology. – 2020. – Vol. 223, N 21. – Art. jeb227280. https://doi.org/10.1242/jeb.227280
13. Old questions, new tools, and some answers to the mystery of fin regeneration / М.-А. Akimenko, M. Marí‐Beffa, J. Becerra, J. Géraudie // Developmental Dynamics. – 2003. – Vol. 226, N 2. – P. 190–201. https://doi.org/10.1002/dvdy.10248
14. Fine structure and histochemistry of the tail fin ray in teleosts / G. S. Montes, J. Becerra, O. M. S. Toledo [et al.] // Histochemistry. – 1982. – Vol. 75. – P. 363–376. https://doi.org/10.1007/BF00496739
15. Structure of the tail fin in teleosts / J. Becerra, G. S. Montes, S. R. R. Bexiga, L. C. U. Junqueira // Cell and Tissue Research. – 1983. – Vol. 230. – P. 127–137. https://doi.org/10.1007/BF00216033
16. Molecular and Cellular Basis of Regeneration and Tissue Repair / D. Pajalunga, A. Mazzola, A. Franchitto [et al.] // Cellular and Molecular Life Sciences. – 2007. – Vol. 65, N 1. – P. 8–15. https://doi.org/10.1007/s00018-007-7425-z
17. Loncarek, J. Building the right centriole for each cell type / J. Loncarek, M. Bettencourt-Dias // Journal of Cell Biology. – 2018. – Vol. 217, N 3. – P. 823–835. https://doi.org/10.1083/jcb.201704093
18. Kalbfuss, N. Towards understanding centriole elimination / N. Kalbfuss, P. Gönczy // Open Biology. – 2023. – Vol. 13, N 11. – Art. 230222. https://doi.org/10.1098/rsob.230222
19. Document 32010L0063. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes Text with EEA relevance // EUR-Lex / European Union. – URL: https://eur-lex.europa.eu/eli/dir/2010/63/oj/eng (date of access: 16.02.2026).
20. Reynolds, E. S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy / E. S. Reynolds // The Journal of Cell Biology. – 1963. – Vol. 17, N 1. – P. 208–212. https://doi.org/10.1083/jcb.17.1.208
21. Flammang, B. E. The fish tail as a derivation from axial musculoskeletal anatomy: an integrative analysis of functional morphology / B. E. Flammang // Zoology. – 2014. – Vol. 117, N 1. – P. 86–92. https://doi.org/10.1016/j.zool.2013.10.001
22. Composition of Peripheral Blood Leukocytes of Pink Salmon Oncorhynchus gorbuscha and Chum Salmon O. keta (Salmonidae) during the Marine Life Period / I. I. Gordeev, L. V. Balabanova, T. A. Suvorova, D. V. Mikryakov // Journal of Ichthyology. – 2022. – Vol. 62, N 2. – P. 322–326. https://doi.org/10.1134/s0032945222020060
23. Hematological methods in fish – Not only for beginners / M. Witeska, E. Kondera, K. Ługowska, B. Bojarski // Aquaculture. – 2022. – Vol. 547. – Art. 737498. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2021.737498
24. Soft Texture of Atlantic Salmon Fillets Is Associated with Glycogen Accumulation / J. S. Torgersen, E. O. Koppang, L. H. Stien [et al.] // PLoS One. – 2014. – Vol. 9, N 1. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085551
25. Analysis of Titin in Red and White Muscles: Crucial Role on Muscle Contractions Using a Fish Model / M.-P. Wu, N.-Ch. Chang, Ch.-L. Chung [et al.] // BioMed Research International. – 2018. – Vol. 2018, N 1. – Art. 5816875. https://doi.org/10.1155/2018/5816875
26. Dietary carbohydrates influence muscle texture of olive flounder Paralichthys olivaceus through impacting mitochondria function and metabolism of glycogen and protein / J. Liu, K. Deng, M. Pan [et al.] // Scientific Reports. – 2020. – Vol. 10, N 1. – Art. 21811. https://doi.org/10.1038/s41598-020-76255-3
27. Powell, R. L. Cultivation and differentiation of satellite cells from skeletal muscle of the rainbow trout Salmo gairdneri / R. L. Powell, M. V. Dodson, J. G. Cloud // Journal of Experimental Zoology. – 1989. – Vol. 250, N 3. – P. 333–338. https://doi.org/10.1002/jez.1402500314
28. Satellite-like cells contribute to pax7-dependent skeletal muscle repair in adult zebrafish / M. A. Berberoglu, T. L. Gallagher, Z. T. Morrow [et al.] // Developmental Biology. – 2017. – Vol. 424, N 2. – P. 162–180. https://doi.org/10.1016/j.ydbio.2017.03.004
Рецензия
JATS XML



























