Preview

Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия биологических наук

Пашыраны пошук

Видовая структура микобиомов корней самосева и сеянцев сосны обыкновенной и ели европейской

https://doi.org/10.29235/1029-8940-2024-69-3-183-197

Анатацыя

В статье изложены результаты молекулярно-генетической идентификации видового состава микобиомов корневых систем 1–2-летних растений сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) и ели европейской (Picea abies (L.) Karst.), произрастающих в лесных питомниках и естественных насаждениях. Установлены показатели биоразнообразия (обилие видов, индекс доминирования, индекс разнообразия Шеннона) и приведена сравнительная характеристика исследованных микобиомов.

Выявлено, что основные видовые комплексы микориз ювенильных растений сосны и ели образованы сходными грибными видами, относящимися к родам Wilcoxina, Phialocephala, Helotiaceae и др. При этом для самосева характерна и моновидовая микориза, представленная базидиомицетами родов Russula, Rhizopogon, Laccaria. Наибольшие значения показателей видового разнообразия грибных сообществ отмечались для самосева как ели европейской (Hmax = 2,6), так и сосны обыкновенной (Hmax = 2,5). Ведущим фактором, определяющим видовую структуру микобиомов в естественных условиях и в питомниках, являлись локальные почвенно-биотические условия.

Аб аўтарах

В. Ярмолович
Белорусский государственный технологический университет
Беларусь


С. Пантелеев
Институт леса НАН Беларуси
Беларусь


И. Хархасова
Институт леса НАН Беларуси
Беларусь


К. Зенюк
Белорусский государственный технологический университет
Беларусь


Л. Иващенко
Белорусский государственный технологический университет
Беларусь


А. Константинов
Институт леса НАН Беларуси
Беларусь


О. Баранов
Отделение биологических наук НАН Беларуси
Беларусь


Спіс літаратуры

1. The emergence of new aggressive leaf rust races with the potential to supplant the resistance of wheat cultivars / R. I. Omara [et al.] // Biology (Basel). – 2021. – Vol. 10, N 9. – Art. 925. https://doi.org/10.3390/biology10090925

2. Comparative analysis of secondary metabolites in Diplodia corticola strains with different virulence degrees associated with canker and dieback of Quercus spp. / M. M. Salvatore [et al.] // Molecules. – 2023. – Vol. 28, N 17. – Art. 6302. https://doi.org/10.3390/molecules28176302

3. Kamienski, F. Les organs végétatifs du Monotropa hypopitys L. / F. Kamienski // Mémoires de la Sociéte national des Sciences Naturelles et Mathématiques de Cherbourg. – 1882. – Vol. 26. – Р. 1–40.

4. Frank, A. B. Über die auf Wurzelsymbiose beruhende Ernährung gewisser Bäume durch unterirdische Pilze / A. B. Frank // Ber. Dtsch. Bot. Ges. – 1885. – Bd. 3. – S. 128–145.

5. Three new species of arbuscular mycorrhizal fungi (Glomeromycota) and Acaulospora gedanensis revised / P. Niezgoda [et al.]. // Front. Microbiol. (Sec. Microbial Symbioses). – 2024. – Vol. 15. – Art. 1320014. https://doi.org/10.3389/fmicb.2024.1320014

6. Henrion, B. Typing truffle species by PCR amplification of the ribosomal DNA spacers / B. Henrion, G. Chevalier, F. Martin // Mycol. Res. – 1994. – Vol. 98. – Р. 37–43. https://doi.org/10.1016/s0953-7562(09)80333-x

7. Молекулярно-генетическая диагностика микоризообразующей микрофлоры сосны и ели в лесных питомниках и культурах / С. В. Пантелеев [и др.] // Генетика и биотехнология XXI века: проблемы, достижения, перспективы: материалы V Междунар. науч. конф., посвящ. 135-летию со дня рождения Н. И. Вавилова, Минск, 21–25 нояб. 2022 г. / Ин-т генетики и цитологии НАН Беларуси. – Минск, 2022. – C. 66.

8. Seb, J. Role of ectomycorrhiza in forest ecosystems: a review / J. Seb, T. Ajungla // Int. J. Adv. Res. – 2018. – Vol. 6, N 8. – P. 866–873. https://doi.org/10.21474/ijar01/7588

9. Тaylor, A. F. S. The ectomycorrhizal symbiosis: life in the real world / A. F. S. Taylor, I. J. Alexander // Mycologist. – 2005. – Vol. 19, N 3. – P. 102–112. https://doi.org/10.1017/s0269915x05003034

10. Hintikka, V. On the macromycete flora in oligotrophic pine forests of different ages in South Finland / V. Hintikka // Acta Bot. Fenn. – 1988. – Vol. 136. – Р. 89–94.

11. Continuity of ectomycorrhizal fungi in self-regenerating boreal Pinus sylvestris forests studied by comparing mycobiont diversity on seedlings and mature trees / L. Jonsson [et al.] // New Phytol. – 1999. – Vol. 142, N 1. – Р. 151–162. https://doi.org/10.1046/j.1469-8137.1999.00383.x

12. Abundance, diversity, and vitality of mycorrhizae of Scots pine (Pinus sylvestris L.) in lignite recultivation sites / B. Münzenberger [et al.] // Mycorrhiza. – 2004. – Vol. 14. – Р. 193–202. https://doi.org/10.1007/s00572-003-0257-2

13. Shifts in taxonomical and functional structure of ectomycorrhizal fungal community of Scots pine (Pinus sylvestris L.) underpinned by partner tree ageing / M. Rudawska [et al.] // Pedobiologia. – 2018. – Vol. 71. – Р. 20–30. https://doi.org/10.1016/j.pedobi.2018.08.003

14. Smith, S. E. Mycorrhizal symbiosis / S. E. Smith, D. J. Read. – 3rd ed. ‒ New York: Academic Press, 2008. – 787 p.

15. Read, D. J. The structure and function of the vegetative mycelium of mycorrhizal roots / D. J. Read // The ecology and physiology of the fungal mycelium: Symposium of the British Mycological Society Held at Bath University, April 11–15, 1983 / ed.: D. H. Jennings, A. D. M. Rayner. – Cambridge, 1984. – P. 215–240.

16. Benito, B. Unravelling potassium nutrition in ectomycorrhizal associations / B. Benito, M. Gonzalez-Guerrero // New Phytol. – 2014. – Vol. 201, N 3. – Р. 707–709. https://doi.org/10.1111/nph.12659

17. Siddiqui, Z. A. Mycorrhizae: Sustainable agriculture and forestry / Z. A. Siddiqui, M. S. Akhtar, K. Futai. – Dordrecht: Springer, 2008. – 359 р. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8770-7

18. Bruns, T. D. Host specificity in ectomycorrhizal communities: what do exceptions tell us / T. D. Bruns, M. I. Bidartondo, D. L. Taylor // Integ. Comp. Biol. – 2002. – Vol. 42, N 2. – P. 352–359. https://doi.org/10.1093/icb/42.2.352

19. Landis, T. D. Inoculate with mycorrhizae, rebuild your soil, and help stop global warming / T. D. Landis, M. A. Amaranthus // Forest Nursery Notes. – 2009. – Vol. 29, N 1. – Р. 13–16.

20. Application of network theory to potential mycorrhizal networks / D. Southworth [et al.] // Mycorrhiza. – 2005. – Vol. 15, N 8. – P. 589–595. https://doi.org/10.1007/s00572-005-0368-z

21. Mukerji, K. G. Mycorrhizae in the integrated pest and disease management / K. G. Mukerji, A. Ciancio // General concepts in integrated pest and disease management / ed.: A. Ciancio, K. G. Mukerji. – Dordrecht, 2007. – Р. 245–266. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-6061-8_10

22. Bruns, T. D. Thoughts on the processes that maintain local species diversity of ectomycorrhizal fungi / T. D. Bruns // Тhe significance and regulation of soil biodiversity: Proceedings of the International Symposium on Soil Biodiversity, held at Michigan State University, East Lansing, May 3–6, 1993 / ed.: H. P. Collins, G. P. Robertson, M. J. Klug. – Dordrecht, 1995. – P. 63–73. https://doi.org/10.1007/978-94-011-0479-1_5

23. Rudawska, M. Ectomycorrhizal fungal assemblages of nursery grown scots pine are influenced by age of the seedlings / M. Rudawska, T. Leski // Forests. ‒ 2021. – Vol. 12, N 2. – Art. 134. https://doi.org/10.3390/f12020134

24. Падутов, В. Е. Метагеномный анализ грибных фитопатогенов посадочного материала берез / В. Е. Падутов // Наука и инновации. – 2022. – № 3. – С. 66–70. https://doi.org/10.29235/1818-9857-2022-3-66-70

25. Падутов, В. Е. Методы молекулярно-генетического анализа / В. Е. Падутов, О. Ю. Баранов, Е. В. Воропаев. – Минск: Юнипол, 2007. – 176 с.

26. Gardes, M. ITS primers with enhanced specifity for basidiomycetes application of the identification of mycorrhizae and rusts / M. Gardes, T. D. Bruns // Mol. Ecol. ‒ 1993. – Vol. 2, N 2. – P. 113–118. https://doi.org/10.1111/j.1365-294x.1993.tb00005.x

27. BLAST [Electronic resource]. – Mode of access: https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi. – Date of access: 04.12.2022.

28. Magurran, А. Е. Ecological diversity and its measurement / A. E. Magurran. ‒ New Jersey: Princeton University Press, 1988. – 179 p.

29. Mueller, G. M. Systematics of Laccaria (Agaricales) in the continental United States and Canada, with discussions on extralimital taxa and descriptions of extant types / G. M. Mueller // Fieldiana Botany. – 1992. – Vol. 30. – P. 1–158.

30. Zeller, S. М. Rhizopogon in North America / S. M. Zeller, C. W. Dodge // Ann. Missouri Bot. Gard. – 1918. – Vol. 5, N 1. – P. 1–30; 32–36. https://doi.org/10.2307/2990021

31. The fungal community. Its organization and role in the ecosystem / ed.: J. Dighton, J. F. White. ‒ 4th ed. – Boca Raton: CRC Press, 2017. – 652 p.

32. Watkinson, S. C. The fungi / S. C. Watkinson, L. Boddy, N. Money. ‒ UK: Academic Press, 2016. – 478 p.

33. Фундаментальная фитопатология / С. Ф. Багирова [и др.]; под ред. Ю. Т. Дьякова. ‒ М.: КРАСАНД, 2023. – 512 с.

34. Федоров, Н. И. Лесная фитопатология / Н. И. Федоров. – Минск: БГТУ, 2004. – 462 с.

35. Работнов, Т. А. Фитоценология / Т. А. Работнов. – 3-е изд., перераб. и доп. ‒ М.: Изд-во МГУ, 1992. – 352 с.


##reviewer.review.form##

Праглядаў: 190


Creative Commons License
Кантэнт даступны пад ліцэнзіяй Creative Commons Attribution 3.0 License.


ISSN 1029-8940 (Print)
ISSN 2524-230X (Online)