Действие комплексного препарата с индукторами устойчивости к патогенам на инфицирование Х-вирусом растений картофеля (Solanum tuberosum L.)

Изучены содержание активных форм кислорода, активность ключевых ферментов антиоксидантной защиты – аскорбатпероксидазы и глутатионредуктазы, уровень экспрессии гена маркера гиперчувствительного ответа (HSR), содержание частиц Х-вируса в рассаде картофеля сорта Уладар, выращенной на ионообменном субстрате в присутствии комплексного препарата, содержащего хитозан, препарат на основе бактерии Bacillus subtilis и салициловую кислоту, при заражении Х-вирусом. Показано накопление активных форм кислорода, возрастание активности аскорбатпероксидазы, понижение уровня экспрессии гена HSR и более низкое содержание частиц Х-вируса в растениях картофеля в таких условиях. Зарегистрировано также увеличение количества мини-клубней и сухого вещества в них при выращивании зараженных Х-вирусом растений картофеля на ионообменном субстрате в присутствии комплексного препарата.

1. Stimulation of cellular mechanisms of potato antivirus resistance by the action of a preparation based on Bacillus subtilis bacteria / T. G. Yanchevskaya [et al.] // Appl. Biochem. Microbiol. – 2018. ‒ Vol. 54, N 3. ‒ P. 324‒330. https://doi.org/10.1134/s0003683818030158

2. Поликсенова, В. Индуцированная устойчивость растений к патогенам и абиотическим стрессовым факторам (на примере томата) / В. Д. Поликсенова // Вестн. БГУ. Сер. 2, Химия. Биология. География. ‒ 2009. ‒ № 1. ‒ С. 48‒60.

3. Choudhary, D. K. Induced systemic resistance (ISR) in plants: mechanism of action / D. K. Choudhary, A. Prakash, B. N. Johri // Indian J. Microbiol. ‒ 2007. ‒ Vol. 47, N 4. ‒ P. 289–297. https://doi.org/10.1007/s12088-007-0054-2

4. Induced Systemic Resistance (ISR) and Fe deficiency responses in dicot plants / F. J. Romera [et al.] // Front. Plant Sci. ‒ 2019. ‒ Vol. 10. ‒ Art. 287. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00287

5. Горбатов, В. С. Экологическая оценка пестицидов / В. С. Горбатов, Ю. М. Матвеев, Т. В. Кононова // Агро XXI. – 2008. – № 1–3. – С. 7–9.

6. Yanchevskaya, Т. G. Physiological and biochemical optimization of mineral nutrition of plants / T. G. Yanchevskaya. ‒ Saarbrucken : Lambert [in Russian], 2018.

7. Влияние фракций препарата Антивайрус на изменение содержания Х-, Y-вирусов в растениях картофеля белорусской селекции in vitro / Т. Г. Янчевская [и др.] // Ботаника (исследования) : сб. науч. тр. – Минск, 2016. ‒ № 45. – С. 376–385.

8. Влияние экзогенной жасмоновой кислоты на функционирование защитной системы рассады картофеля (Solanum tuberosum L.) при выращивании на искусственном ионообменном субстрате и заражении Х-вирусом картофеля / Е. В. Вязов [и др.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусі. Сер. біял. навук. ‒ 2020. ‒ Т. 65, № 4. ‒ C. 391–401.

9. Влияние элиситоров бактериального происхождения на функционирование защитной системы рассады картофеля (Solanum tuberosum L.), зараженной Х-вирусом / Е. В. Вязов [и др.] // Вес. Нац. акад. навук Беларусі. Сер. біял. навук. ‒ 2020. ‒ Т. 65, № 2. ‒ C. 135–143.

10. Влияние хитозана на окислительный статус, ферменты окислительного метаболизма и инфицирование Х-вирусом растений картофеля (Solanum tuberosum L.) на искусственных ионообменных субстратах in vivo / Т. Г. Янчевская [и др.] // Физиология растений и генетика. ‒ 2019. ‒ Т. 51, № 2. ‒ С. 147‒160.

11. Kozel, N. V. Barley leaf antioxidant system under photooxidative stress induced by Rose Bengal / N. V. Kozel, N. V. Shalygo // Rus. J. Plant Physiol. – 2009. – Vol. 56. – P. 316‒332. https://doi.org/10.1134/S1021443709030030

12. Over-expression of ascorbate oxidase in the apoplast of transgenic tobacco results in altered ascorbate and glutathione redox states and increased sensitivity to ozone / M. Sanmartin [et al.] // Planta. – 2003. – Vol. 216. – P. 918–928. https://doi.org/10.1007/s00425-002-0944-9

13. Mittler, R. Detection of ascorbate peroxidase activity in native gels by inhibition of the ascorbate dependent reduction of nitroblue tetrazolium / R. Mittler, B. A. Zilinskas // Anal. Biochem. – 1993. – Vol. 212, N 2. – P. 540–546. https://doi.org/10.1006/abio.1993.1366

14. Bradford, M. A rapid and sensitive method for the quatitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding / M. Bradford // Anal. Biochem. – 1976. – Vol. 72, N 1‒2. – P. 248–254. https://doi.org/10.1016/0003-2697(76)90527-3

15. Технология ДНК-типирования генов устойчивости ячменя к засухе : метод. указания / И. Н. Доманская [и др.]. – Минск : Право и экономика, 2011. – 31 с.

16. Пасалари, Х. Экспрессия генов защитного ответа в листьях трансгенного картофеля после обработки глифосатом / Х. Пасалари, А. Н. Евтушенков // Вестн. БГУ. Сер. 2, Химия. Биология. География. ‒ 2016. ‒ № 1. ‒ С. 31–35.

17. Инструкция по использованию иммуноферментного диагностического набора для определения вирусов картофеля / Рос. с.-х. акад. НПО по картофелеводству. – М. : Коренево, 2011. – 8 с.

18. Тютерев, С. Л. Экологически безопасные индукторы устойчивости растений к болезням и физиологическим стрессам / С. Л. Тютерев // Вестн. защиты растений. – 2015. ‒ Т. 1, № 83. ‒ С. 3‒13.

19. Евстигнеева, Т. А. Действие фитоактивного хитозана и салициловой кислоты на устойчивость растений картофеля к вирусу / Т. А. Евстигнеева, Н. А. Павлова, С. Л. Тютерев // Вестн. защиты растений. ‒ 2012. ‒ № 2. ‒ С. 27‒33.

20. Тютерев, С. Л. Природные и синтетические индукторы устойчивости растений к болезням / С. Л. Тютерев. ‒ СПб. : Всерос. НИИ защиты растений, 2014. ‒ 212 с.