Preview

Известия Национальной академии наук Беларуси. Серия биологических наук

Расширенный поиск

ГЕНЕТИЧЕСКИЙ ПОЛИМОРФИЗМ И РАСПРОСТРАНЕННОСТЬ ВИРУСА МОЗАИКИ ЯБЛОНИ В САДАХ БЕЛАРУСИ

Аннотация

С помощью метода ОТ-ПЦР обнаружено, что среди деревьев из действующих промышленных и маточно-черенковых садов 1,5 % заражены вирусом мозаики яблони. У деревьев старше 50 лет инфекция не выявлена. Степень идентичности вирусов мозаики яблони, распространенных на территории Беларуси, определенная с помощью сиквенирования фрагментов гена, кодирующего белок оболочки, колебалась в пределах от 98,9 до 99,6 %. Анализ эволюционных взаимоотношений полученных нами нуклеотидных последовательностей и их гомологов из базы данных GenBank показал, что сходство между генотипами вируса наблюдается как у изолятов, выделенных из разных растений, растущих в одном географическом регионе, так и у изолятов, выделенных из одного вида растений, растущих в различных географических регионах. Это может быть следствием двух способов распространения вируса мозаики яблони – вегетативного и механического.

Об авторах

П. В. КУЗМИЦКАЯ
Институт генетики и цитологии Н АН Беларуси
Беларусь


О. Ю. УРБАНОВИЧ
Институт генетики и цитологии Н АН Беларуси
Беларусь


Список литературы

1. Bereger, P. The complete nucleotide sequence of apple mosaic virus (ApMV) RNA 1 and RNA 2: ApMV is more closely related to alfalfa mosaic virus than to other ilarviruses / P. Bereger, P. Shiel // J. of Gen. Virol. – 2000. – Vol. 81. – P. 273–278.

2. Sanchez-Navarro, J. Nucleotide sequence of apple mosaic ilarvirus RNA 4 / J. Sanchez-Navarro, V. Pallas // J. of Gen. Virol. – 1994. – Vol. 75. – P. 1441–1445.

3. Petrzik, K. Remarkable variability of apple mosaic virus capsid protein gene after nucleotide position 141 / K. Petrzik, O. Lenz // Arch. of Virol. – 2002. – Vol. 147, N 7. – P. 1275–1285.

4. Molecular characterization of the Indian strain of Apple mosaic virus isolated from apple (Malus domestica) / T. Thokchom [et al.] // Phytoparasitica. – 2009. – Vol. 37, N 4. – P. 375– 379.

5. Lichens – a new source or yet unknown host of herbaceous plant viruses? / K. Petrzik [et al.] // Eur. J. of Plant Pathol. – 2014. – Vol. 138, N 3. – P. 549–559.

6. Кухарчик, Н . В. Вирусные и фитоплазменные болезни плодовых и ягодных культур в Беларуси / Н. В. Кухарчик. – Минск: Беларус. навука, 2012. – 209 с.

7. Effect of apple mosaic virus on the growth, yield and quality of apple / B. B. Singh [et al.] // Punjab Hortic J. – 1979. – Vol. 19. – P. 80–82.

8. Sutic, d. Virus diseases of fruit trees / D. Sutic, R. Ford, M. Tosic // Handbook of plant virus diseases. – 1999. – P. 321–432.

9. Economic implications of a virus prevention program in deciduous tree fruits in the US / T. Cembali [et al.] // Crop Protection. – 2003. – Vol. 22, N 10. – P. 1149–1156.

10. Zawadzka, B. The effect of mosaic and rubbery wood infection on the growth and yield of apple trees / B. Zawadzka // Zesz. Probl. Postepow Nauk Roln. – 1983. – Vol. 291. – P. 385–390.

11. Shiel, P. J. The complete nucleotide sequence of Apple mosaic virus (ApMV) RNA 1 and RNA 2: ApMV is more closely related to alfalfa mosaic virus than to other ilarviruses / P. J. Shiel, P. H. Berger // J. of Gen. Virol. – 2000. – Vol. 81. – P. 273–278.

12. Petrzik, K. Capsid protein sequence gene analysis of Apple mosaic virus infecting pears / K. Petrzik // Eur. J. of Plant Pathol. – 2005. – Vol. 111. – P. 355–360.

13. EPPO Standards – Certification schemes – PM 4/27(1) Pathogen-tested material of Malus, Pyrus and Cydonia // EPPO Bull. – 1999. – Vol. 29, N 3. – P. 239–252.

14. Detection of four apple viruses by ELISA and RT-PCR assays in Turkey / K. Caglayan [et al.] // Turk. J. Agric. For. – 2006. – Vol. 30. – P. 241–246.

15. Hassan, M. Simultaneous detection and identification of four pome fruit viruses by one- tube pentaplex RT-PCR / M. Hassan, A. Myrta, J. Polak // J. of Virol. Meth. – 2006. – Vol. 133. – P. 124–129.

16. Detection of four apple viruses by multiplex RT-PCR assays with coamplification of plant mRNA as internal control / W. Menzel, W. Jelkmann, E. Maiss // J. of Virol. Meth. – 2002. – Vol. 99. – P. 81–92.

17. Thompson, J. D. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice / J. D. Thompson, D. G. Higgins, T. J. Gibson // Nucl. Acids Res. – 1994. – Vol. 22, N 22. – P. 4673–4680.

18. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0 / K. Tamura [et al.] // Mol. Biol. and Evolution. – 2013. – Vol. 30, N 12. – P. 2725–2729.

19. Saitou, N. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees / N. Saitou, M. Nei // Mol. Biol. and Evolution. – 1987. – Vol. 4, N 4. – P. 406–425.

20. Drake, J. W. Mutation rates among RNA viruses / J. W. Drake, J. J. Holland // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 1999. – Vol. 96. – P. 13910–13913.

21. Roossinck, M. J. Mechanisms of plant virus evolution / M. J. Roossinck // Annu. Rev. Phytopathol. – 1997. – Vol. 35. – P. 191–209.


Рецензия

Просмотров: 460


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1029-8940 (Print)
ISSN 2524-230X (Online)